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Toxikologie und Zellkultur

Übersicht der toxikologischen und biologischen Analytikinfrastruktur

SEON verfügt über eine Vielzahl an modernsten und hochwertigen Messgeräten, um verschiedenste Partikel bezüglich ihrer chemischen, physikalischen und biologischen Eigenschaften ausführlich charakterisieren zu können. Wir bieten unseren Kooperationspartnern und externen Kunden an, entsprechende Analysen durchzuführen.

Gerne können Sie uns diesbezüglich kontaktieren

Auf dieser Seite finden Sie eine ausführliche Auflistung unserer biologischen Analytikinfrastruktur sowie eine Übersicht unserer gängigen Analysemethoden:

Beckman Coulter Gallios

Durchflusszytometer

In einem Durchflusszytometer werden blanke oder gefärbte Probenzellen einer Zellsuspension durch einen engen Kanal geleitet und vereinzelt. Dabei werden sie mit Laser unterschiedlicher Farbe angeregt und eine Reihe von Sensoren erfassen die diversen Lichtarten, die von den Zellen gebrochen oder ausgestrahlt werden. Die von den Sensoren erfassten Daten werden mittels der Kaluza Software gesammelt und integriert, um ein umfassendes Bild der Probe zu erhalten.

Unser Gerät ist mit einem Probenwechsler sowie mit 3 Anregungslaser (violett: 405 nm; blau: 488 nm; rot: 638 nm) ausgestattet. Die Emmission der Zellen wird über 10 Photomultuplier in Abhänigkeit des Anregungslasers detektiert (violett: 430 nm/40 nm BP,  550 nm/40 nm BP; blau: 525 nm/40 nm BP, 575 nm/30 nm BP, 620 nm/20 nm BP, 695 nm/30 nm BP, 755 nm LP; rot: 675 nm/20 nm BP, 725 nm/20 nm BP, 755 nm LP)

Zeiss Axio Observer

Echtzeit-Zell-Bildgebungseinheit

Unser Axio Observer Fluoreszenzmikroskop von Zeiss ist ausgestattet mit einer Inkubationskammer mit Temperatur- und CO2 Kontrolle. Dies ermöglicht die Echtzeitbildgebung von Zellen in nativer Inkubationsumgebung. Die hochauflösende digitale Mikroskopiekamera erlaubt zudem die Darstellung selbst feiner Zellstrukturen.

Zeiss Axiovert 40

Inverses Mikroskop

Das Axiovert 40 der Fa. Zeiss ist ein universell einsetzbares inverses Mikroskop für verschiedene Applikationen in der Biologie und in der Medizin zur Untersuchung von Zellkulturen, Blut oder Gewebeproben. Hierbei stehen verschiedene Mikroskopier- bzw. Kontrastverfahren zur Verfügung: Hellfeld, Dunkelfeld, Phasenkontrast und Polarisationkontrast.

ProXima

Dokumentationssystem für Gele

Das ProXima von Isogen Life Science ist ein High-Performance Dokumentationssystem für die Applikationen Chemilumineszenz, Biolumineszenz, UV/VIS-Fluoreszenz oder Densitometrie von kolorimetrisch gefärbten Gelen und Blots.

Muse

Zell-Analysator

Das Muse ist eine Art "miniFACS" und eignet sich sowohl zum schnellen aber genauen Zählen von Zellen als auch zur Durchführung verschiedener Assays wie z.B. Vitalitätsbestimmung.

IncuCyte S3

Automatisierte Echtzeit Zellbildanalyse

Mit dem IncuCyte ist es möglich, tiefergehende und physiologisch relevante Informationen über Zellen in Echtzeit zu erhalten. Hierbei werden kinetische Daten durch die automatisierte Aufnahme und Analyse von Bildern in Zeiträumen von wenigen Stunden bis zu Wochen erzeugt.

xCELLigence RTCA SP

Automatisierte Echtzeit Zellvitalitätsanalyse

Das xCELLigence-System der Fa. ACEA Biosciences ist ein mikroelektronisches Biosensorsystem für Zelltests. Es ermöglicht eine dynamische, markierungsfreie Zellanalyse in Echtzeit für verschiedene Forschungsanwendungen. Hierfür werden speziell entwickelte Mikroplatten mit ineinander integrierten Goldmikroelektroden zur nicht-invasiven Überwachung der Lebensfähigkeit von Zellen unter Verwendung der elektrischen Impedanz als Messparameter eingesetzt. Die kontinuierliche Überwachung der Zellviabilität ermöglicht die Differenzierung verschiedener Störungen der Zellviabilität wie Seneszenz, Zelltoxizität und Beeinträchtigung der Proliferation.

MC 4 Plus

Koagulometer

Das MC 4 plus ist ein semi-automatisches 4 Kanal Kugelkoagulometer für das Labor mit mittleren Probenaufkommen mit mechanischer Erfassung. Dieses Gerät wird u.a. zur Besimmung der Gerinnungszeit verwendet, wobei die Messung entweder manuell durch Tastendruck oder komfortabel und reproduzierbar durch eine automatische, an das Gerät angeschlossene, Startpipette gestartet wird.

3D Cell Explorer

3D Mikroskop

Beim 3D Cell Explorer der Fa. Nanolive wird markierungsfrei die 3D-Brechungsindexverteilung der Zelle erfasst. Dabei ermöglicht die extrem niedrige Lichtleistung, mit der die Hologramme erzeugt werden, das völlige Fehlen von Phototoxizität, was zu einer hervorragenden zeitlichen Auflösung führt.

UV/VIS

Photometrie

Für die direkte Quantifizierung von Chromophoren, z.B. für verschiedene Zellvitalitätsassays basierend auf Fluoreszenzfarbstoffen, verwenden wir ein SpectraMax iD3 Plattenphotometer der Fa. Molecular Devices.

Histologie

Gerätschaften
  • Paraffinausgießstation EG 1150H von Leica: beheizt, mit Mikroprozessorsteuerung. Die große beheizte Arbeitsfläche mit integriertem Kühlspot verfügt über einen Paraffinablauf und jeweils ein beheiztes Bad für Einbettformen sowie Kassetten.
  • Leica Rotationsmikrotom RM 2255
  • Vollautomatischer Standkryostat MNT von Slee. Es zeichnet sich durch einfache und intuitive Bedienung, ein vollautomatisiertes Rotationsmikrotom und eine raumsparende Ausführung aus. Die große Edelstahlkammer kann in kürzester Zeit auf bis zu -35 °C temperiert werden.

Histologie

Assays (Auswahl)

Kryo-Fixierung /Paraffineinbettung und Anfertigung von Dünnschnitten

Färbemethoden

  • Berliner Blau
  • Hämatoxilin-Eosin
  • Masson Goldner Trichrom Färbung
  • DAPI
  • Charakterisierung zellulärer Bestandteile durch Immunfluoreszenzfärbungen (LAMP-1, F-Actin, GM 130, EGFR, Transferinrezeptor CD 71, ...)

Zyto-/Genotoxizität

Assay-Übersicht (Auswahl)
  • Proliferation, morphologische Zellanalyse (Real-time cell imaging: IncuCyte)
  • Plasma-Membran Integrität (LDH, Photometer)
  • Zellproliferation (BrdU, Photometer, Durchflusszytometer)
  • Caspase-3/7 Aktivierung (Durchflusszytometer)
  • Metabolische zelluläre Aktivität (MTT, WST, XTT, Photometer)
  • Apoptose/Nekrose (Annexin V/ Propidiumiodid Färbung, Durchflusszytometer)
  • Mitochondrienmembran-Potential (DiIC1(5), Durchflusszytometer)
  • Zellzyklus und DNA-Degradation (Propidiumiodid-Triton, Durchflusszytometer)
  • Calcium-Influx (Fluo-4, Durchflusszytometer)
  • ATP-Quantifizierung (CellTiter-Glo, Photometer)
  • DNA-Doppelstrangbruch (yH2AX, Westernblot, Durchflusszytometer)
  • DNA-Schäden (COMET-Assay, Fluoreszenzmikroskopie)
  • HET-CAM Assay

Oxidativer Stress

Assays (Auswahl)
  • intrazelluläres H2O2 (DCFH, Durchflusszytometer)
  • Intrazelluläres O2- (Hydroethidium, Durchflusszytometer)
  • Messung von reduziertem Glutathion (Monobromobimane, Durchflusszytometer)
  • Membranperoxidation (BODIPY 581/591 C11, Durchflusszytometer)
  • Lipid-Peroxidation (Bestimmung von Malondialdehyd mit Thiobarbitursäure, Photometer)